酶切反應(yīng)條件的優(yōu)化
酶切反應(yīng)條件的優(yōu)化
當(dāng)建立內(nèi)切酶酶切反應(yīng)體系時有幾個關(guān)鍵因素需要考慮。比如,如何在反應(yīng)體系中加入適量的 DNA、內(nèi)切酶和緩沖液,就可以獲得最佳酶切效果。根據(jù)定義,在 50 μl 反應(yīng)體系中,1 單位的限制性內(nèi)切酶可以在 60 分鐘內(nèi)完全切割 1 μg 的底物 DNA。上述酶、DNA 與總反應(yīng)體積的比值可以作為建立反應(yīng)體系的參考數(shù)據(jù)。但是,目前大多數(shù)科研人員會遵循下表中所列的標(biāo)準(zhǔn)反應(yīng)條件,使用 5-10 倍過量酶切 DNA,這樣有利于克服由于 DNA來源不同、質(zhì)量和純度不同而造成的不利因素。省時反應(yīng)體系用于帶有 Time-Saver 標(biāo)記的限制性內(nèi)切酶,省時內(nèi)切酶可以在 5-15 分鐘切割 DNA。此外,RE-Mix 限制性內(nèi)切酶預(yù)混液也可以使用。NEB 整理了以下有關(guān)內(nèi)切酶反應(yīng)的經(jīng)驗和技巧,以幫助您實現(xiàn)最佳酶切效果。
標(biāo)準(zhǔn)反應(yīng)體系:
限制性內(nèi)切酶
10
units*
DNA
1 μg
10X NEBuffer
5 μl (1X)
總反應(yīng)體系
50
μl
溫育溫度
因酶而異
溫育時間
60 分鐘
*足夠切割所有類型的
DNA。
省時酶切反應(yīng)體系:
限制性內(nèi)切酶
1 μl
DNA
1 μg
10X NEBuffer
5 μl (1X)
總反應(yīng)體系
50 μl
溫育溫度
因酶而異
溫育時間
5-10 分鐘*
*具有省時酶切特性的內(nèi)切酶也可以過夜反應(yīng)而沒有星號活性。
內(nèi)切酶
? 從冰箱取出后請一直置于冰上。
? 酶最后加入到反應(yīng)體系中。
? 加入酶之前將反應(yīng)混合物混勻,可以用移液槍上下吹打或輕彈管壁,然后在離心機中快速離心。切忌振蕩混 勻。
? 一般情況下,我們推薦使用 5-10 單位酶量/μg DNA,基因組 DNA 用 10-20 單位酶量消化 1 小時。
? NEB 推出一系列的高保真(HFTM)內(nèi)切酶,為建立酶切反應(yīng)體系提供了更多便利,有關(guān)高保真酶的更多信息。
DNA
? 避免酚、氯仿、酒精、EDTA、變性劑或過多鹽離子的污染。推薦在純化過程中多清洗幾次。
? 甲基化的 DNA 會抑制某些酶的切割效率。
關(guān)于甲基化更多信息請登陸 www.
neb- china.com 及
www.neb.com。
緩沖液
? 使用終濃度為 1X 的緩沖液。
? BSA 已被添加到 NEB 緩沖液 1.1、1.2、1.3 和 CutSmart 緩沖液中,無需額外添加 BSA。
? 在不需要 BSA 即可達到最佳活性的酶切反應(yīng)中如果加入 BSA 也不會影響酶切效果。
反應(yīng)體系
? 建議在 50 μl 反應(yīng)體系中消化 1 μg 底物 DNA。
? 加 入內(nèi)切酶的量應(yīng)不超過總體積的 10%,以避免甘油過量引起的星號活性。
? 內(nèi)切酶貯存液中的添加物(如:甘油和鹽)和底物溶液中尚存的殘余物(如:鹽、EDTA 或乙醇)會導(dǎo)致小體 積反應(yīng)出現(xiàn)問題。下述為小體積反應(yīng)技術(shù)指南。
酶切反應(yīng)體系的選擇
* 當(dāng)內(nèi)切酶用量小時,用推薦稀釋液稀釋后使用。
**使用 10 μl 反應(yīng)體系時,溫育時間不要超過 1 小時,以防蒸發(fā)。
溫育時間
? 標(biāo)準(zhǔn)體系溫育 1 小時,省時酶切體系溫育 5-15 分鐘。
? 使用省時內(nèi)切酶。
? 許多內(nèi)切酶都可以用更少單位的酶消化16小時。詳情請登陸 www.neb-china.com 及 www.neb.com。
終止反應(yīng)
若消化后的 DNA 不需要進行后續(xù)實驗操作:
? 用終止液終止反應(yīng) [50% 甘油、50 mM EDTA(pH 8.0)和 0.05% 溴酚藍](如 NEB #B7021)。按每 50 μl反應(yīng)體系中加入 10 μl 的比例進行。
若消化后的 DNA 需要進行后續(xù)實驗操作:
? 用 熱失活法(參見 2013﹒2014 商品目錄 278-283 頁或登陸 www.nebchina.com 及 www.neb.com,以確定該酶能否熱失活)。
? 若該酶不能熱失活,利用商業(yè)化的離心柱或酚/氯仿抽提去除內(nèi)切酶。
貯存
? 大多數(shù)內(nèi)切酶建議保存在
-20℃。只有少數(shù)內(nèi)切酶若貯存時間超過30
天建議保存在 -70℃。
詳細(xì)的貯存信息請參閱
www.neb.com 及
www.neb-china.com。
? 10X NEBuffer 也應(yīng)保存在 -20℃。
穩(wěn)定性
? NEB 每 4 個月都會對所有的內(nèi)切酶進行活性檢測。使用期限標(biāo)注在每管產(chǎn)品的標(biāo)簽上。
? 在任何情況下,都應(yīng)盡可能的避免將酶置于高于 -20℃ 的溫度下。
對照反應(yīng)
如果在切割底物 DNA 時遇到了問題,建議加入以下對照實驗:
? 酶切對照 DNA(含有多個已知內(nèi)切酶切割位點的 DNA,如 Lambda DNA 或腺病毒-2 DNA),以檢測內(nèi)切酶的活性。
? 如果對照 DNA 能夠被切割而實驗中的底物 DNA 不能,可以將這兩種 DNA 混合在一起再進行酶切,以檢測實驗用的底物 DNA 中是否存在抑制反應(yīng)的物質(zhì)。如果確實存在某種抑制因子(通常為鹽、EDTA 或酚),則混合之后對照 DNA 也不能被切割。
星號活性
? 當(dāng)內(nèi)切酶在非最適條件下使用時可能會產(chǎn)生星號活性(詳細(xì)信息請參考 2013﹒2014 商品目錄 285 頁內(nèi)
容)。
? 可以通過以下方法降低星號活性:使用高保真(HF)內(nèi)切酶
雙酶切反應(yīng)
使用兩種限制性內(nèi)切酶同時切割一種底物 DNA(雙酶切反應(yīng))是一種常見的省時方案。超過 200 種的限制性內(nèi)切酶在CutSmartTM 反應(yīng)緩沖液中有 100% 的活性,這使得雙酶切反應(yīng)更加簡便。如果您使用的限制性內(nèi)切酶提供的不是CutSmartTM 反應(yīng)緩沖液,請參考限制性內(nèi)切酶的活性表(參考 2013﹒2014 商品目錄 278-283 頁),它列出了每一種限制性內(nèi)切酶在四種標(biāo)準(zhǔn)反應(yīng)緩沖液中的活性。
雙酶切反應(yīng)體系的建立
? CutSmart 限制性內(nèi)切酶的雙酶切可以在CutSmart 反應(yīng)緩沖液中進行。否則,選擇兩種酶都有活性的反應(yīng)緩沖液進行雙酶切反應(yīng)。如果擔(dān)心有星號活性,建議使用高保真(HF)限制性內(nèi)切酶。
? 按推薦條件建立反應(yīng)體系。反應(yīng)體系中甘油的終濃度應(yīng)< 5%,以避免星號活性(見 2013﹒2014 商品目錄 285 頁)。例如,50 μl 反應(yīng)體系中總酶量 ≤ 5 μl。
? 如果需要兩種不同溫育溫度,先選擇合適的反應(yīng)緩沖液,加入第一種酶在適合的溫度下反應(yīng),熱失活第一種酶后再加入第二種酶按推薦溫度溫育。
? 非最佳反應(yīng)緩沖液中反應(yīng)時,適當(dāng)調(diào)整酶量和反應(yīng)時間,以期克服非最佳反應(yīng)條件帶來的不利因素。
使用特殊緩沖液時雙酶切體系的建立(特殊緩沖液代號為“U”)
? NEB 目前有三種限制性內(nèi)切酶提供特殊緩沖液:EcoRI、SspI 和 DpnII。在大部分情況下,DpnII 需要進行分步酶切。請注意 EcoRI 有 HF 形式的高保真酶,是提供 CutSmart 緩沖液的。
分步酶切體系的建立
? 如果沒有一個共同的緩沖液使得兩種限制性內(nèi)切酶的活性均大于 50%,就需要進行分步酶切。
? 分步酶切應(yīng)從推薦緩沖液鹽濃度低的酶開始,溫育至酶切完畢。
? 調(diào)整緩沖液中鹽濃度(用小體積濃縮鹽溶液)直至滿足第二種酶的要求。
? 加入第二種酶完成雙酶切反應(yīng)。
? 也可在第二步酶切反應(yīng)前過柱純化 DNA。
實驗問題指南
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